Объем содержимого одной единицы, мл
|
Объем лекарственного средства для посева, мл
|
Объем питательной среды
|
Менее 1 | Весь объем | 1:4 |
1-4 | 1 | 1:4 |
5-19 | 2 | 1:4 |
20-100 и более | 4 | 1:4 |
Посевы просматривают в рассеянном свете ежедневно и по окончании периода инкубации. Наличие роста микроорганизмов в питательных средах оценивают визуально по появлению мутности, пленки, осадка и других микроскопических изменений. Выявленный рост микроорганизмов необходимо подтвердить микроскопированием мазков, окрашенных по Граму.
Испытуемый препарат считают удовлетворяющим требованиям испытания на стерильность при отсутствии роста микроорганизмов.
(Согласно инструкции по ГФ XI, том 2, стр. 183 "Испытание на пирогенность")
Исследования на пирогенность лаборатории ЦГСЭН Республиканского и областного значения проводят только в случаях арбитражных исследований при наличии вивария. В других случаях контрольно-аналитические лаборатории РАО "Дори-Дармон".
Кратность обследований с отбором проб составляют два раза в год и по показаниям.
Кратность обследований инъекционных растворов на пирогенность с отбором проб может быть реже, чем два раза в год, при удовлетворительных результатах микробиологических анализов воды для инъекций, при удовлетворительных данных бактериологического контроля посуды, флаконов, пробок, прокладок и субстанций (сухих лекарственных веществ), используемых при их изготовлении.
Испытание проводят на здоровых кроликах обоего пола, не альбиносах, массой 2-3, 5 кг, содержавшихся на полноценном рационе. Каждый кролик должен находиться в отдельной клетке в помещении с постоянной температурой. Колебания температуры не могут превышать ±3°С. При уборке клеток и взвешивании животных их оберегают от возбуждения (избегать шума и резких движений).
В течение недели, предшествующей опыту, кролики не должны терять в массе.
Взвешивание их проводят до дачи корма не менее 3 раз через день. Животные, теряющие в массе, к опыту непригодны. В течение 3 суток перед испытанием у каждого подопытного кролика измеряют температуру. Измерения проводят ежедневно утром до дачи корма при помощи медицинского ртутного или электротермометра, позволяющего определить температуру с точностью до 0,1°С. Датчик термометра вводят в прямую кишку на глубину 7-9 см (в зависимости от массы кролика) за внутренний сфинктер на время, необходимое для достижения максимальной температуры. Исходная температура подопытных кроликов должна быть в пределах 38,5 - 39,5° С. Животные с более высокой или более низкой температурой для опыта не пригодны. Кроме того, кроликов, впервые предназначаемых для испытания лекарственных средств, проверяют на реактивность путем внутривенного введения 10 мл/кг 0,9% стерильного не пирогенного раствора натрия хлорида, соответствующего требованиям фармакопейной статьи. В случае изменения температуры у кроликов более чем на ±0,4° С животные считаются непригодными для опыта.
Не позднее, чем за 18 ч до опыта кроликов переводят в помещение, в котором осуществляют испытание на пирогенность. Оно должно проводиться в отдельной комнате с постоянной температурой, не отличающейся от температуры помещения, в котором кролики постоянно содержались до опыта, более чем на ±2°С, и с колебаниями во время испытания, не превышающими 2°С, изолированной от шума, в спокойной обстановке. Вечером накануне опыта у животных отбирают остаток корма. До и во время опыта животные корма не получают (воду дают без ограничения).
Если нет других указаний в частной статье, для испытания отбирают не менее 2 флаконов или ампул от каждой серии, содержащей от 1000 до 10000 флаконов или ампул. При количестве в серии флаконов или ампул более 10000 отбирают по 3 флакона или ампул от каждой серии. Из отобранных флаконов или ампул готовят общий раствор (смешанная проба). От серии, содержащей до 1000 флаконов или ампул, для испытания отбирают по 1 флакону или ампуле.
Вода для инъекций или другие применяемые растворители, а также шприцы и иглы должны быть стерильными и не пирогенными. Испытуемые лекарственные средства должны быть стерильными. Их вводят кроликам в ушную вену. Другие пути введения указывают в частной статье на лекарственное средство. Для каждого кролика берут отдельную иглу. Растворы испытуемых лекарственных средств, подогретые до 37°С (при отсутствии других указаний в частных статьях), вводят в количествах и растворителях, предусмотренных соответствующими частными статьями (Гф XI, том 1). Для испытания на пирогенность воды для инъекций предварительно готовят из нее изотонический 0,9 % раствор натрия хлорида. Натрия хлорид должен быть стерильным и не пирогенным, что обеспечивается воздушным методом его стерилизации при температуре 180 или 200°С в течение от 30 . до 60 мин в зависимости от массы образца. Шприцы, иглы и необходимую стеклянную посуду стерилизуют этим же методом при температуре 180°С в течение 60 мин. Количество вводимого изотонического 0,9% раствора натрия хлорида составляет 10 мл на 1 кг массы кролика. Все количество раствора, предварительно нагретого до 37°С, вводят в течение 2 мин.
Испытуемый раствор проверяют на 3 кроликах.
Группа должна состоять из животных, близких по массе (отличающихся не более чем на 0,5 кг.). Перед введением раствора у кролика дважды с интервалом 30 мин измеряют температуру. Различия в показателях температуры не должны превышать 0,2°С. В противном случае кролик для испытания не используется. Результат последнего измерения принимают за исходную температуру. Раствор вводят не позднее чем через 15-30 мин после последнего измерения температуры.
Последующее измерение температуры при внутривенном введении испытуемого раствора проводят 3 раза с промежутками в один час. При других путях введения - 5 раз с промежутками в один час, если в частной статье нет других указаний.
Воду для инъекций или раствор лекарственного средства считают не пирогенными, если сумма повышений температуры у 3 кроликов меньше или равна 1,4°С. Если эта сумма превышает 2,2°С, то воду для инъекций или раствор лекарственного средства считают пирогенными. В случаях, когда сумма повышений температуры у 3 кроликов находится в пределах от 1,5 до 2,2°С, испытание повторяют дополнительно на 5 кроликах. В этом случае воду для инъекций или раствор лекарственного средства считают не пирогенными, если сумма повышений температуры у всех 8 кроликов не превышает 3,7°С. Если же эта сумма равна 3,8°С или больше, воду для инъекций или раствор лекарственного средства считают пирогенными.
В частной фармакопейной статье могут быть указаны другие пределы отклонения температуры.
Если в частной статье на лекарственное средство нет других указаний, случаи понижения температуры у кроликов принимают за нуль.
Кролики, бывшие в опыте, могут быть использованы для определения пирогенности повторно, но не ранее чем через 3 суток, если введенный им до этого раствор лекарственного средства или вода для инъекций были не пирогенными. Если же введенный раствор лекарственного средства или вода для инъекций оказались пирогенными, кролики могут быть использованы для дальнейших опытов через 2 нед. При повышении температуры у кроликов в подобных случаях на 1,2°С и более они используются через 3 нед. Если исследуемые вещества обладают антигенными свойствами, то одних и тех же кроликов нельзя использовать для испытания повторно (если нет специальных указаний в частной статье).
Примечания. На основании опыта контроля на пирогенность медицинских иммунобиологических препаратов (МИБП) допускаются следующие особенности при испытании этих препаратов.
1. Испытание МИБП проводят на кроликах массой 1,5-2,5 кг.
2. Проверка реактивности кроликов является необязательной.
3. Термометр вводят в прямую кишку на глубину 5-7 см (в зависимости от массы кролика).
4. Понижение температуры учитывают так же, как ее повышение.
5. Кролики, бывшие в опыте, могут быть использованы для определения пирогенности повторно (но не более 3 раз) с интервалом 2-3 суток, если ранее введенный препарат был не пирогенным. Если введенный препарат оказался пирогенным, кролики не могут быть использованы повторно.
7.1. Исследования на синегнойную палочку.
При исследовании воды очищенной инъекционных растворов до стерилизации, глазных капель, смывов с аптечного стекла, инвентаря, оборудования и рук персонала иногда отмечается рост синегнойной палочки, для выделения которой специальные посевы можно не производить, так как рост их колоний удается обнаружить на среде Эндо или питательном агаре. На среде Эндо колонии плоские желтовато-красные, без металлического блеска, со специфическим запахом. На питательном агаре колонии расплывчатые, с просвечивающим краем; среда приобретает зеленоватый цвет. При окраске по Граму палочки грамоотрицательные. С целью обнаружения способности продуцировать пигмент, культуры изучают на питательном агаре с добавлением 2% глицерина или маннита.
Идентификация синегнойной палочки проводится по следующим тестам:
7.2. Исследование воды очищенной лекарственных средств на бактерии рода Протея.
Специального посева для выявления этих бактерий можно не проводить, т. к. их удается обнаружить на среде Эндо в виде ползучего вуалеобразного роста. В случае выделения бактерий рода Протея необходимо проводить их видовую идентификацию с применением среды Гисса с мальтозой и изучением способности образовывать индол. Эти тесты дают возможность идентифицировать протеус вульгарис и протеус мирабилис.
N N
п. п. |
Наименование
|
Предельно допустимое содержание микроорганизмов в 1 куб. см
|
Примечание
|
1. | 2 | 3 | 4 |
1. | Растворы для инъекций до стерилизации, не позднее 1-1,5 часов после изготовления | ||
1.1 | Глюкозы 5% и 40% | ||
1.2 | Натрия хлорида 0,9% | ||
1.3 | Новокаина 0,25% и 2% | ||
1.4 | Натрия хлорида 5,0 Калия хлорида 0,07 Кальция хлорида 0,12 Новокаина 2,5 Воды для инъекций до 1000.0 |
20-30 в виде исключения до 50 | |
1.5 | Рингеры - Локка | ||
1.6 | Сергозина 40% | ||
2. | Глазные капли | ||
2.1 | Раствор сульфацила растворимого (альбуцида натрия) 20% и 30% | ||
2.2. | Раствор атропина сульфата 1% | 5-7 | |
2.3. | Раствор дикаина 1% | ||
2.4. | Раствор этилморфина гидрохлорида (дионина) 1% | ||
2.5. | Раствор калия йодида 2% | ||
2.6. | Раствор синтомицина 0,25 | ||
2.7. | Раствор цинка сульфата 0,25% Борной кислоты 2% - 10,0 |
||
2.8. | Раствор цинка сульфата 0,25 -10,0 | ||
2.9 | Раствор пилокарпина гидрохлорида | 10-15 | |
2.10 | Раствор прозерина 0,25 | ||
2.11 | Раствор рибофлавина 0,001 (0,002) Аскорбиновой кислоты 0,05 (0,03) глюкозы 0,2 воды дистиллированной 10,0 |
||
3. | "Вода очищенная", полученная дистилляцией, ионным обменом, обратным осмосом и другими способами, применяемая для приготовления не инъекционных лекарственных средств (фс 42 -2619-89 и УзГосстандарта-950-2000 "питьевая вода" | Не более 100 | |
4. | "Вода для инъекций" для изготовления стерильных растворов сразу же после перегонки или получения (фс 422620-89) | 10-15 | |
5. | "Вода для инъекций", после ее стерилизации, используемая для изготовления асептическим способом глазных капель и концентрированных растворов (концентратов) | 0-3 | |
6. | Субстанции (сухие лекарственные вещества), используемые для приготовления инъекционных растворов | 100 |
Содержание кишечной палочки, протея и синегнойной палочки в воде очищенной и других лекарственных формах не допускаются.
Примечание. Специального исследования на синегнойную палочку и протей не производят. Определяют их по ходу других исследований.
1. Определяют среднеарифметическое число колоний, выросших на двух чашках (общее число выросших колоний на двух чашках суммируют и делят на два)
2. Определяют ОМЧ в 1 куб. м воздуха по формуле Омелянского В.Л., где:
а - среднеарифметическое число колоний на чашке
s - площадь чашки Петри кв. см
т - время экспозиции в мин.
б - экспозиция чашек по Омелянскому (за 5 мл на чашку Петри площадью 100 кв. см оседает столько микроорганизмов, сколько их содержится в 10 л воздуха)
100 - пересчет площади чашки на 100 кв. см. 100 - перерасчет на 1 куб. м воздуха. X - ОМЧ в 1 куб. м воздуха. X = ((ax100x5)/SxT)x100. Удобно пользоваться таблицей расчета числа бактерий в 1 куб. м воздуха по В.Л. Омелянскому.
N
п. п. |
Диаметр чашки
|
Площадь чашки, в кв. см
|
Множитель
|
1. | 8 | 50 | 100 |
2. | 9 | 63 | 80 |
3. | 10 | 78 | 60 |
4. | 11 | 95 | 50 |
5. | 12 | 130 | 45 |
Пример пересчета КОЕ/ОМЧ в 1 куб. м при использовании седиментационного метода за 10 мин экспозиции.
1. На двух чашках выросло за 10 мин:
1) 17 кол 30:2 = 15 кол
2) 13 кол
2. Диаметр используемых чашек 10 см.
3. Площадь чашки = 78 кв. см
4. Множитель = 60
5. 15 выросших колоний X 60 = 900 КОЕ в 1 куб. м воздуха. При вычислении St.aureus расчет тот же, только учитываются колонии идентифицированные как St.aureus.
Седиментационный метод является сугубо ориентировочным, и количество микроорганизмов посчитанное по формуле или таблице Омелянского, как правило, в три раза меньше цифр, полученных при использовании аппарата Кротова.
Поэтому, при оценке воздуха этим методом, основное значение имеют не сами показатели КОЕ, а их динамические изменения в процессе наблюдения.
N
|
Наименование помещений
|
Условия работы
|
Общее количество микроорганизмов в 1 куб. м воздуха
|
Кол-во золотистого стафилакокка в 250 л воздуха
|
Кол-во плесневых грибов и дрожжевых грибов в 250 л воздуха
|
1 | Асептический блок | До работы | Не выше 500 | Не должно быть | Не должно быть |
После работы | Не выше 1000 | Не должно быть | Не должно быть | ||
2 | Ассистентская, фасовочная, дефектарная, материальная | До работы | Не выше 750 | Не должно быть | Не должно быть |
После работы | Не выше 1000 | Не должно быть | Не должно быть |
К растворам для инъекций в нормативно-технической документации предъявляется ряд требований, в том числе, должны быть стерильными и апирогенными (т.е. должны отсутствовать пирогенные вещества - это продукты жизнедеятельности и распада микроорганизмов. Применение для инъекций лекарств, обсемененных микроорганизмами, даже после предварительной стерилизации может вызвать у больного пирогенную реакцию повышение температуры, озноб, т.д.)
Стерильность инъекционных растворов, простерилизованных в автоклавах, например, при показании его манометра в 1,1 атм. экспозиции 15 минут не всегда бывают качественной. Это происходит потому, что в процессе стерилизации из стерилизационной камеры автоклава недостаточно продувается воздух. При этом в стерилизационной камере температура достигает лишь до 102°С, вместо 121°С.
Чтобы улучшить надежность работы паровых и сухожаровых стерилизаторов, необходимо регулярно проводить - "Определение качества работы стерилизаторов" приглашением работников санитарно-эпидемической службы, и с использованием контрольных средств технических максимальных термометров, термопар, биотестов или новейших индикаторов стерилизации (ИСТ, ИСТЭ).
Регулярность определения качества работы стерилизаторов:
Кроме того, оператору стерилизационных аппаратов необходимо контролировать каждый сеанс стерилизации с использованием новейших индикаторов стерилизаций температурно-экспозиционных, ИСТЭ-110-121-132-180, утвержденных МЗ РУз от 16.02.1998 г. N 012-606.
Индикаторы плавления (тиомочевина, сера, бензойная кислота, сахароза и др.) из практики исключены.
В аптеках можно добиться изготовления апирогенных растворов для инъекций при качественной дезинфекции и стерилизации предметов, применяемых в технологии изготовления инъекционных растворов.
Эффективность стерилизации может быть нарушена из-за:
Для устранения вышеизложенных причин, которые могут привести к некачественной стерилизации лекарственных средств, оператору стерилизационных аппаратов необходимо пройти специальный курс обучения по обслуживанию стерилизационных аппаратов, и иметь допуск к работе с ними. А также пройти курс обучения по стерилизации лекарственных средств и других предметов, используемых при изготовлении инъекционных растворов, и иметь соответствующее удостоверение.
Для контроля стерильности применяют "Сухую питательную среду для контроля стерильности" (тиогликотилевую) (ТУ 42.14 N 161-79) и среду Сабуро (жидкую). Вместо коммерческой тиогликолевой среды может быть использована тиогликолевая среда индивидуального приготовления. Состав и приготовление питательных сред. Тиогликолевая среда индивидуального приготовления:
панкреатического гидролизата казеина 15,0 г
дрожжевого экстракта (10%) 5,0 г
натрия хлорида 2,5 г
глюкозы 5,0 г
цистина (цистеина) 0,75 г
тиогликолевой кислоты или 0,3 мл
тиогликолий натрия 0,5 г
раствора резазурина натрия 1:1000
(свежеприготовленного) 1,0 мл
агара 0,75
воды дистиллированной до 1000 мл рН после стерилизации 7,0±0,2
Допускается приготовление среды без резазурина натрия
Тиогликолевую среду можно хранить в течение 14 суток со дня приготовления при температуре от 10 до 25°С в защищенном от света месте.
В случае если при хранении среды, содержащей резазурин, верхний слой среды (более 1/3 объема) окрасится в розовый цвет, среду можно регенерировать нагреванием на кипящей водяной бане в течение 10-15 мин до исчезновения розовой окраски с последующим быстрым охлаждением. В случае если окраска не исчезает после нагревания, среду считают непригодной к употреблению. Регенерацию среды можно проводить только один раз.
пептона ферментативного 10 г
Глюкозы 40 г
Воды дистиллированной до 1000 мл
РН после стерилизации 5,6 ±0,2
Обе среды стерилизуют насыщенным паром при избыточном давлении 0,11 ±0,02 МПа (1,1 ±0,2 кгс/кв. см) и при температуре (121±1) °С в течение 15 мин.
1. СанПиН N 0078-98 МЗ РУз от 16.01.1998 г.
2. Методические указания по микробиологическому контролю в аптеках, утвержденные Минздравом N 3182-84 от 29.12.1984 г.
3. Государственная фармакопея, одиннадцатое издание, выпуск 2, (ГФ XI) 1990г.
4. Методические указания по контролю работы стерилизаторов с использованием индикаторов стерилизации ИСТ и ИСТЭ -120-132 -16 - 180°С, утвержденные МЗ РУз от 16.02.1998 г. N 012-6406.
5. Методические указания по контролю работы паровых и воздушных стерилизаторов, утвержденные Минздравом РУз 28.02.1991 г. N 15X6-5.
6. Методические указания по изготовлению стерильных растворов в аптеках, утвержденные Минздравом РУз от 09. 01.1991 г.
7. ФС 42-2619-89. "Вода очищенная". 1989 г.
8. ФС 42-2620-89 "Вода для инъекций". 1989 г.
9. УзГосстандарт-950-2000 "Вода питьевая".
10. Приказ МЗ РУз N 155 от 30.04.95 г.
11. Методы микробиологического контроля лекарственных средств, утвержден МЗ РУз 13.10.1998 г.
12. Метод. рекомендации по контролю стерилизации, утверждены МЗ РУз 30.11.1979 г.
Вода очищенная
|
||
для лекарственных форм
|
для приготовления инъекционных растворов и глазных капель
|
|
Материал для исследования | Берут 500 мл. Требование ГОСТа 950 - 2000 |
Отбирают в количестве 1 единицы до 450 мл в емкостях, в которых осуществляется стерилизация |
Метод исследования | 1. Определение КОЕ МАФАМ По 1 мл воды в две чашки + 12 мл МПА заливают: t° 37° - 24 часа и 24 часа при комнатной температуре. Учет и подсчет колоний с лупой. Выводят среднее арифметическое в 1 мл. 2. Плесневые грибы Посев по 0,5 млх2 чашки, заливают Сабуро агаром t° -22°-72 часа Подсчет числа колоний в двух чашках в одном мл. Затем, количество колоний МАФАМ в одном мл + плесневые грибы в 1 мл = числу выросших колоний в одном мл воды. 3. Определение Килииндекса По ГОСТ 950-2000 РУз засевают : 3 объем х 100 мл на ГПС 3 объем х 10 мл на ГПС 3 объем х 1,0 мл на ГПС |
Определение КОЕ МАФАМ Наличие БГКП в 1,0 куб. см 9 куб. см в 1% ГПС +1 куб. см исследуемой воды при t° 37° - 18 ч. Высев на Эндо t° 37° '18 ч. Подозрительные колонии изучают в мазке, окрашивают по Граму. При наличии Гр-палочек засевают в ГПС с поплавком t° 37° - 18 ч. Наличие К + Г + говорит о присутствии БГКП. Количественное определение БГКП в 1 мл или гр. 1 мл помещают в чашку, заливают средой Эндо t°37° 18 ч. Считают количество выросших колоний, подозрительных по БГКП. В результате указывают количество выросших колоний в 1 мл типичных для БГКП (см. приложение N 2 настоящей инструкции) |
Лекарственные вещества
|
|||
до стерилизации
|
после стерилизации
|
Сухие
|
|
Материал для исследования | Отбирают во время приготовления не позднее 1,5 часа в тех же флаконах в которых подготавливают для стерилизации. Так же забирают глазные капли и приготовленные асептическим способом | Забирают в аптечной упаковке лекарственные вещества и глазные капли | Отбирают стерильными ложками в количестве 30-50 грамм Если таблетки, стерильным пинцетом в банку или колбу. |
Метод исследования | 1. Определение КОЕ МАФАМ 2.Наличие БГКП в 1,0 куб. см 3. Количество БГКП в одном мл или грамме (см. исследование воды для приготовления инъекционного растворов) |
1. Определение стерильности 1) посев на тиогликолиевую среду 1,0- 1,5 мл Выращивание при t°37°-8 суток 2) посев на среду Сабуро бульон 1,0- 1,5 мл Выращивание при t°22,5°-8 суток ежедневно просматриваются посевы. Появление мути, пленки, осадка говорит о росте микроорганизмов. Делают мазок, окрашивают по Граму, микроскопируют. Выписывают результат с характеристикой выросших микроорганизмов. |
Если лекарственные формы дают плохие результаты до стерилизации, то исследуют сухие вещества. Приготавливают разведения общепринятых доз для данного лекарственного вещества. Например: 5% р-р глюкозы, 0,9% р-р хлорида натрия и т.д. и р-р подвергают исследования. По пункту лекарственные вещества до стерилизации. |
Посуда
|
Воздух
|
|
Пробки, прокладки, флаконы и прочее
|
||
Материал для исследования | Забирают: 1) 3 флакона одинаковой емкости, укупоренные пробками. 2) 5 шт пробок стерильным пинцетом помещают в стерильную банку 3) 5 шт прокладок и др. вспомогательный материал |
Забирают: 1) в стерилизационном асептическом блоке 2) ассистентской 3) фасовочной 4) материальной 5) отбор проб производят на уровне рабочего стола при закрытых форточках и дверях |
Метод исследования | Флаконы 3 шт. ополаскивают 10 куб. см стерильной воды (то же делают прокладки и т.д.) Определяют: 1) количество МАФАМ в 1 куб. см, число колоний в 1 куб. см умножают на 10, т.е. определяют число колоний во всей смывной жидкости 2) наличие БГКП 8 куб. см смывной жидкости засевают в 1 куб. см 10% ГПС, t° 37° 18 часов и далее по схеме . Результаты: Количество МАФАМ не должно превышать 150 колоний с 3-х флаконов, 5 пробок, 5 прокладок (т.е. в 10 куб. см смывной жидкости) |
Аппаратом ПБА-818 На ОМЧ на 2% питат. агар При 25 л в 1 мин - 4 мин - 100л 2) На St. aureus-ЖСА - 10 мин-250 л. t°37°-24 ч. и 24 часа при комнатной температуре. 3) На плесневые грибы - на агар Сабуро -10 мин -250 л t° 22°- 72 ч. При исследованиях по эпидпоказаниям на гр- флору (сальмонеллы) чашки держат открытыми 2-4 часа. Седиментационный метод допускается при отсутствии аппарата для отбора проб воздуха на МПА-10 мин на ОМЧх2 чашки На ЖСА - 45 мин х 2 ч Интерпретация результатов см. инструкцию Приложение N 1, 2 |
Смывы
|
|
Материал для исследования | Берут: с рабочего места провизора тампоном на среду Кесслера. Со стола для приготовления инъекционных растворов. Стол для приготовления глазных капель, весы для сухих в-в, тара для хранения прокладок, пробок, используемых для укупорки растворов и капель, ступки, пластмассовые пластинки. |
Метод для исследования | Весы роговые, кран водопроводный в ассистентской, руки персонала, полотенце, сан. одежда. Определяют: 1) БГКП на среде Кесслера. 2) Определение наличия золотистого стафилококка по показаниям. Смыв берут в 5 мл 6,5% солевого бульона - t° 37°- 18 ч - высев на чашку с ЖСА Пр. N 155 от 30.04.1995 МЗ РУз. БГКП в смывах не допускается St. aureus в смывах не допускается |